植物研究

线粒体自噬在植物中的研究进展 

来源:植物研究 【在线投稿】 栏目:期刊导读 时间:2021-06-10

线粒体为细胞的生命活动提供所需的大部分能量,线粒体功能障碍会引发多种疾病。因此,通过线粒体自噬清除衰老、损伤的线粒体,控制线粒体的质量和数量,对于维持细胞内环境的稳态非常重要。线粒体自噬广泛存在于动物、植物以及酵母中。在过去的研究中,对于酵母和动物线粒体自噬的研究取得了很大进展,但是对于植物线粒体自噬的机制和自噬过程中参与的蛋白还不清楚。本研究综述了线粒体自噬在植物中的研究进展,包括线粒体自噬相关的受体、蛋白酶以及线粒体自噬在植物中的生物学功能,为后期对于植物线粒体自噬的研究提供一定的基础。

1 植物中的线粒体自噬

线粒体对于能量代谢、生物合成和细胞死亡的调控至关重要,并且参与了细胞内的应激反应和信号传导[1,2]。线粒体功能异常会引起多种疾病,比如神经退行性疾病、脑损伤[3]、糖尿病[4]等,因此线粒体质量控制至关重要。线粒体自噬是细胞中的线粒体降解过程,可以清除功能异常或多余的线粒体,维持细胞中的线粒体平衡。目前,对于植物的线粒体自噬研究还处于早期阶段,但是在多个研究中,已经观察到植物的线粒体自噬现象。

植物自噬的研究主要通过细胞培养进行,在去除培养基的营养物质时会造成细胞自噬[5,6],所以植物自噬的相关研究一直受到限制。不过在植物的超微结构观察中,看到多种自噬现象,包括线粒体自噬。Toyooka 等[7]在绿豆幼苗的子叶细胞中观察到,在自噬过程中线粒体被包裹在类似内质网的双膜结构中,这些自噬样结构会与裂解泡融合,介导线粒体自噬,降解淀粉颗粒和细胞成分。Kwon 等[8]在拟南芥中观察到,木质部导管分子分化后出现许多包裹线粒体的自噬体,说明自噬参与了细胞的分化。Wertman 等[9]在研究一种水生草本植物的程序性细胞死亡(Programmed Cell Death,PCD)中发现,在发育的PCD 后期可以观察到液泡中有线粒体聚集体出现。Bi 等[10]在研究 ACD5(ACCELERATED CELL DEATH 5)时发现,拟南芥中ACD5 的突变会造成自发的PCD,并伴随着自噬的发生,在自噬体中存在线粒体活性氧(Reactive Oxygen Species,ROS)的增加。Li 等[11]在研究线粒体基质蛋白酶 Lon1 时发现,拟南芥中Lon1 丢失会导致线粒体更新增加,可能是由于线粒体自噬被诱发。Li 等[12]在研究自噬相关蛋白时还发现,在拟南芥衰老过长中,线粒体蛋白和线粒体囊泡会通过自噬被降解。植物中的线粒体自噬存在于植物的整个生命活动中,对于植物的生长发育、衰老死亡都起重要作用。

2 植物的线粒体自噬调控机制

在植物的自噬研究中,氮饥饿[12]和碳饥饿[13]是应用最广泛的2 个自噬诱发条件,说明细胞的营养状态可能在植物自噬中起作用。虽然植物的线粒体自噬与哺乳动物、酵母可能在概念上具有相似的机制(图 1)[14],植物中的大多数核心 ATG 基因都是保守的[15,16],但是植物中的线粒体调节因子与哺乳动物和酵母并不保守,而且在哺乳动物和酵母的线粒体自噬中都有特定的参与者,比如ATG32 和PINK1等,在拟南芥中没有发现这样的蛋白[17]。

2.1 哺乳动物线粒体自噬调控机制

在现有的研究中,关于哺乳动物细胞线粒体自噬机制的研究有很多说法,其中有2 种自噬调控机制最为经典,如图1 所示。一种机制依赖于线粒体膜电位,在受损的线粒体中膜电位下降,PINK1 在线粒体外膜(Outer Mitochondrial Membrane,OMM)上聚集,通过自磷酸化活化,招募Parkin,并将Parkin和泛素(Ubiquitin,Ub)磷酸化,激活 Parkin 的 E3 泛素连接酶活性,使得线粒体外膜蛋白泛素化,最终导致核心 ATG 蛋白的聚集,引发线粒体自噬[18,19]。另一种机制由缺氧或解偶联剂诱导引发,线粒体自噬受体FUNDC1 是一个3 次跨膜蛋白,定位于OMM,在缺氧或解偶联条件下,招募Ser/Thr 激酶ULK1 到OMM,并与之结合;ULK1 与 FUNDC1 相互作用,将其Ser17 磷酸化,增强FUNDC1 与自噬相关蛋白LC3的结合,引发线粒体自噬[20]。

2.2 酵母线粒体自噬调控机制

酵母中的线粒体自噬主要由线粒体蛋白ATG32介导,调控机制如图1 所示。ATG32 是酵母线粒体自噬特有的蛋白质,于2009 年被Klionsky 和Ohsumi实验室同时发现,定位于 OMM[21,22]。在受损线粒体中,ATG32 的 Ser114 和 Ser119 磷酸化并作为受体蛋白,招募自噬膜上的ATG8(哺乳动物LC3 的同系物)、ATG11,与之相互作用形成聚合体,启动线粒体自 噬[23]。 其 中 ,ATG32-ATG11 复 合 物 的 形 成 受ATG32 的 Ser114 磷酸化调控,ATG11 被酪蛋白激酶(Casein Kinase 2,CK2)磷酸化可以稳定 ATG32 与ATG11的相互作用,从而招募线粒体到酵母液泡附近的自噬组装位点(Phagophore Assembly Site,PAS)[24,25];ATG32-ATG11 复合物与核心ATG 蛋白一起产生自噬膜,ATG32 与ATG8 相互作用可以促进自噬膜吞噬线粒体,使线粒体被降解掉[26,27]。

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